常規(guī)的PCR擴增需要進行細菌培養(yǎng)、質(zhì)粒制備等多步操作后才能進行基因擴增,操作繁瑣耗時較長,同時在反復的操作中DNA量損失也較大,產(chǎn)率較低。在1989年  Gussow Clackson3建立了菌落PCR( colony  PCR)法,菌落PR與我們通常的普通DNA的PCR的不同在于,直接以單個菌作為模板。是一種可以快速鑒定菌落是否為含目的質(zhì)粒的陽性菌落,操作簡單,快速,在轉(zhuǎn)化鑒定中較常用。

PCR原理

常規(guī)的PCR需要專門制備DNA模板,面菌落PCR可直接以單個菌落作為模板,用無菌牙挑取單個菌落到TE級沖液中,煮沸10mn,渦旋振蕩后短暫離心,用1-2pl裂解液作為DNA模板,省去抽提模板DNA這一步,通過特異性引物或通用引物對目的基因進行快速擴增大大節(jié)約了時間和成本

材料選擇

1.固體平板培養(yǎng)基上培養(yǎng)出的單菌落

②10XPCR緩沖液(100mmol/ L. Tris-HCL, pH8.3,500 mmol/L KCL;0.1%明膠;15mmol/LMgCl2)。

③目的基因引物

④高壓滅菌牙簽

⑤抗性平板。

⑥ Triton x100

7.EP管

8.離心機

操作方法

①用高壓滅菌的牙簽挑取單個菌落,先在含抗性的平板上畫線,做保種用,然后將牙簽置于2  Intar×100中攪和一下,以便懸浮涂在牙簽上的菌,將相應的菌和平板上的畫線區(qū)做上對應的②將裝有20 u  Triton×100的EP管煮沸10min,冷卻后120r/min離心lmin去除細胞

③反應體系(25ul)

Taq酶(5U/ul） 0.5ul 引物P2(10umol/L） 0.5ul

10×Taq緩沖液 2. 5ul dNTPs(各 2. 5mmol/L) 2ul

模板

引物Pl(10mo/L) 0.5ul

④PR擴增條件:95℃ 5min 94℃ 30s, 55℃ 30s,72℃ 60s,30循環(huán);72℃5min;4℃

⑤電泳,觀察結果,對陽性的結果相對應的主平板上的菌落保種或者進行測序。

注意事項

①菌落PCR時,加入菌液模板的體積不能過大,否則會影響PCR體系,導致擴增失敗,般取1~2l做25l的PCR體系,模板如果太多了,引物就不夠用了,顯然擴增不出來,這種現(xiàn)象在以質(zhì)粒為模板的PCR里面很多,提出來的質(zhì)粒不要忘記稀釋

②減少擴增循環(huán),25-30個循環(huán)對于菌落PCR是比較合適,擴增循環(huán)過多,會產(chǎn)生假

③假陽性的控制。如果用載休引物來擴增一般可以降低假陽性,或者多用幾對不同的引物擴增,以增加真陽性的篩選結果,PCR結果最好做酶切鑒定

④PCR條件的控制。熱啟動可以消除引物二聚體,退火溫度可以低

PCR應用

1.挑取重組子克隆

常規(guī)的堿裂解和煮沸法(   Sambrook,1989)12均需要經(jīng)過菌體過夜培養(yǎng)、菌體裂解及乙醇沉淀過程。一般情況下,在挑取的若干克隆中只有少部分為重組子,因此提取質(zhì)粒過程消耗的時間很多,而利用菌落PCR挑取重組子克隆的過程則避開了提取質(zhì)粒的繁瑣過程。陳淑霞等人口利用單菌落PCR法直接篩選含有綠色熒光蛋自基因(  green fluorescent protein,GFP)和不耐熱腸毒素B亞基和耐熱腸毒素融合基因(  LTB-ST)外源基因的重組克隆,陽性克隆可以擴增出目的條帶,和質(zhì)粒PCR擴增進行比較結果一致。證明單菌落PCR進行重組菌陽性克隆的鑒定是非常有效的

2.基因組測序

傳統(tǒng)的測序首PCR擴增是以堿裂解等方法抽提的DNA為模板,成功率高但較為繁瑣,采用菌落PCR方法,將樣品跳過DNA抽提這一步,直接以菌體熱解后暴露的DNA為模板進行PCR擴增和熒光標記,使建庫到測序前各步驟的總成本減少了1/3,唐曄盛等釆用該法成功測定了秈稻(  Oryza sativa indica)廣陸矮4號的L173號 BAC DNA全長序列

總結

常規(guī)PCR技術是目前分子生物學中的一種常用的鑒定方法和技術手段,在嚴格操作的前提下,PCR的結果是十分可靠的,但常規(guī)PCR擴增需要一些前期準備工作,如DNA模板的制備與純化,操作繁瑣,耗時費力,成本較高,而且DNA制備過程中的某些試劑會對擴增帶來不良影響。因此,菌落PCR為簡便快速地篩選DNA陽性重組克隆以及大規(guī)?；驕y序等提供了一個簡便、高效的途徑.